极个别同学
Western Blot 实验常见问题与解决办法
一、蛋白样品制备
问题1:蛋白提取量低
- 原因:组织或细胞破碎不充分、裂解液配方不合适、样品保存不当导致蛋白降解。
- 解决办法:优化破碎方法(如增加超声时间、使用液氮研磨);根据样本类型选择合适裂解液(如含蛋白酶抑制剂防止降解);新鲜制备样品,避免反复冻融。
问题2:蛋白样品中杂质多
- 原因:裂解液成分残留、细胞碎片未充分去除。
- 解决办法:裂解后进行高速离心(12000 rpm以上);采用过滤或透析方法去除杂质;使用预清洗过的裂解液。
二、SDS-PAGE电泳
问题1:条带扭曲、拖尾
- 原因:凝胶聚合不均匀、样品中含有不溶性颗粒、电压过高。
- 解决办法:确保凝胶试剂新鲜配制,聚合时温度稳定;样品离心后取上清;降低电泳电压,延长电泳时间
问题2:蛋白条带分离效果差
- 原因:凝胶浓度选择错误、电泳缓冲液失效。
- 解决办法:根据蛋白分子量选择合适凝胶浓度(如12%分离胶适合10-100 kDa蛋白);更换新鲜电泳缓冲液。
三、转膜
问题1:转膜效率低
- 原因:转膜时间或电流不足、转膜缓冲液成分错误、膜与胶贴合不紧密。
- 解决办法:根据蛋白分子量调整转膜条件(大分子蛋白需延长时间或提高电流);使用含甲醇的缓冲液(但糖蛋白需避免甲醇);排除气泡,使用转膜夹压实。
问题2:膜上出现白色斑点
- 原因:转膜过程中膜干燥、凝胶与膜之间存在气泡。
- 解决办法:全程保持膜和凝胶湿润;转膜前充分浸泡膜和滤纸,确保无气泡残留。
四、封闭与抗体孵育
问题1:背景信号过高
- 原因:封闭不充分、抗体浓度过高、洗涤不彻底。
- 解决办法:延长封闭时间或更换封闭液(如5%脱脂奶粉或BSA);优化抗体稀释比例;增加洗涤次数和时间(每次10-15分钟,3-5次)。
问题2:目的条带弱或无条带
- 原因:抗体特异性差、一抗或二抗失活、抗原量不足。
- 解决办法:选择高特异性抗体,使用阳性对照验证;增加上样量或浓缩样品;重新配制抗体,确保孵育温度和时间合适。
五、显色与成像
问题1:条带模糊或拖影
- 原因:曝光时间过长、显影液污染、膜未完全干燥。
- 解决办法:缩短曝光时间,尝试梯度曝光;更换新鲜显影液;确保膜干燥后再扫描。
问题2:化学发光无信号
- 原因:发光底物失效、曝光时间过短、仪器灵敏度不足。
- 解决办法:使用新鲜配制的底物;延长曝光时间或更换高灵敏度成像设备。
一、蛋白样品制备
问题1:蛋白提取量低
- 原因:组织或细胞破碎不充分、裂解液配方不合适、样品保存不当导致蛋白降解。
- 解决办法:优化破碎方法(如增加超声时间、使用液氮研磨);根据样本类型选择合适裂解液(如含蛋白酶抑制剂防止降解);新鲜制备样品,避免反复冻融。
问题2:蛋白样品中杂质多
- 原因:裂解液成分残留、细胞碎片未充分去除。
- 解决办法:裂解后进行高速离心(12000 rpm以上);采用过滤或透析方法去除杂质;使用预清洗过的裂解液。
二、SDS-PAGE电泳
问题1:条带扭曲、拖尾
- 原因:凝胶聚合不均匀、样品中含有不溶性颗粒、电压过高。
- 解决办法:确保凝胶试剂新鲜配制,聚合时温度稳定;样品离心后取上清;降低电泳电压,延长电泳时间
问题2:蛋白条带分离效果差
- 原因:凝胶浓度选择错误、电泳缓冲液失效。
- 解决办法:根据蛋白分子量选择合适凝胶浓度(如12%分离胶适合10-100 kDa蛋白);更换新鲜电泳缓冲液。
三、转膜
问题1:转膜效率低
- 原因:转膜时间或电流不足、转膜缓冲液成分错误、膜与胶贴合不紧密。
- 解决办法:根据蛋白分子量调整转膜条件(大分子蛋白需延长时间或提高电流);使用含甲醇的缓冲液(但糖蛋白需避免甲醇);排除气泡,使用转膜夹压实。
问题2:膜上出现白色斑点
- 原因:转膜过程中膜干燥、凝胶与膜之间存在气泡。
- 解决办法:全程保持膜和凝胶湿润;转膜前充分浸泡膜和滤纸,确保无气泡残留。
四、封闭与抗体孵育
问题1:背景信号过高
- 原因:封闭不充分、抗体浓度过高、洗涤不彻底。
- 解决办法:延长封闭时间或更换封闭液(如5%脱脂奶粉或BSA);优化抗体稀释比例;增加洗涤次数和时间(每次10-15分钟,3-5次)。
问题2:目的条带弱或无条带
- 原因:抗体特异性差、一抗或二抗失活、抗原量不足。
- 解决办法:选择高特异性抗体,使用阳性对照验证;增加上样量或浓缩样品;重新配制抗体,确保孵育温度和时间合适。
五、显色与成像
问题1:条带模糊或拖影
- 原因:曝光时间过长、显影液污染、膜未完全干燥。
- 解决办法:缩短曝光时间,尝试梯度曝光;更换新鲜显影液;确保膜干燥后再扫描。
问题2:化学发光无信号
- 原因:发光底物失效、曝光时间过短、仪器灵敏度不足。
- 解决办法:使用新鲜配制的底物;延长曝光时间或更换高灵敏度成像设备。
2025-05-16
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