LPS诱导细胞炎症模型建立实验流程

脂多糖(LPS)诱导细胞炎症模型常用于炎症相关的细胞生物学研究。下面以常用的RAW264.7巨噬细胞为例,介绍其实验流程:

实验准备

1. 细胞:RAW264.7巨噬细胞。

2. 试剂:LPS、细胞培养基(如DMEM)、胎牛血清(FBS)、青霉素-链霉素双抗、胰蛋白酶、PBS缓冲液、CCK-8试剂、ELISA试剂盒(检测炎症因子,如TNF-α、IL-6等)。

3. 仪器:细胞培养箱、超净工作台、离心机、酶标仪、倒置显微镜。

实验步骤

1. 细胞复苏:从液氮罐中取出RAW264.7细胞冻存管,迅速放入37℃水浴锅中摇晃,使其快速融化。在超净工作台中将细胞悬液转移至离心管,加入5mL含10%FBS的DMEM培养基,1000rpm离心5min,弃上清,再用培养基重悬细胞,接种至培养瓶,置于37℃、5%CO₂培养箱培养。

2. 细胞传代:当细胞密度达到80%-90%时进行传代。弃去旧培养基,用PBS洗涤细胞2次,加入适量胰蛋白酶消化,在倒置显微镜下观察,待细胞变圆脱落后,加入含10%FBS的培养基终止消化,吹打细胞制成单细胞悬液,按1:3或1:4的比例接种至新培养瓶继续培养。

3. 细胞铺板:取对数生长期细胞,胰蛋白酶消化后计数,用含10%FBS的DMEM培养基调整细胞密度为5×10⁴-1×10⁵个/mL,接种至96孔板,每孔100μL,放入培养箱孵育过夜,使细胞贴壁。

4. LPS诱导:细胞贴壁后,将培养基更换为无血清或低血清(1%FBS)培养基同步化处理2-4h 。设置对照组(不加LPS,只加等量培养基)和实验组(加入不同浓度LPS,如0.1μg/mL、1μg/mL、10μg/mL等 ),每个浓度设置3-5个复孔,继续培养12-24h。

5. 检测指标

- 细胞活力:采用CCK-8法检测。向每孔加入10μL CCK-8试剂,继续孵育1-4h,用酶标仪测定450nm处吸光度值,计算细胞活力。

- 炎症因子分泌:收集细胞培养上清,按照ELISA试剂盒说明书操作,检测TNF-α、IL-6等炎症因子含量。

注意事项

1. 实验全程需严格无菌操作,避免细胞污染。

2. LPS的浓度和诱导时间需预实验优化,以获得最佳炎症模型效果。

3. 细胞铺板时需保证细胞均匀分布,避免出现细胞聚集或密度不均的情况。
2025-05-20
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